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海南师范大学 化学系 >>物理化学实验>> 实验十九  酵母蔗糖酶Km值的测定             首页
实验十九  酵母蔗糖酶Km值的测定
目的要求  基本原理  仪器和试剂  实验操作  数据记录处理  思考与讨论  注意事项 

【目的要求】

    1. 掌握米-曼氏方程式的应用,熟悉求Km值及Km值的意义;
    2. 掌握旋光法测定化学反应动力学参数的原理和实验操作技术;
    3. 通过求酵母蔗糖酶的Km值进一步加深对林-贝氏方程式的理解应用

【基本原理】

  酶是生物体内产生的具有极高催化活性和选择性的蛋白质类物质,它的催化活性比其他催化剂高10-1~10-13倍,酶催化反应一般是在常温、常压、近中性的条件下进行,反应酶的用量一般很少。一种酶一般只能催化某一类特定的反应。

  米哈得-门顿(Michaelis-Menten)、布里格斯(Briggs)等详细研究了酶催化反应动力学,认为酶催化反应机理为

      ①

     ②

  反应式中,S为反应物(也称底物);E为酶;ES为底物和酶形成的中间化合物;P为产物。反应①很快达到平衡,反应②是控制步骤。用稳态法处理,该反应的速率 r 表达式为

    (1)

  若令,则上式(1)变为:

    (2)

  kM 即为米氏常数,在指定的条件下,每一种酶均有特定的kM值,与浓度无关它是表征酶特性的一个重要的动力学参量。若酶的原始浓度为[E]0,反应达到稳定太后有

[E]0=[E]+[ES]     (3)

  (4)

  则(2)式变为          (5)

  式(5)就是表征酶催化反应动力学著名的米哈利-门顿方程。在整个反应过程中,一般[E]0是不变的,r仅是底物浓度[S]的函数。如以r为纵坐标,[S]为横坐标,作图可得酶催化反应速率曲线,如右图。

  当[S]很大时,kM »[S],式(5)变为 r = k2[E]0,反应速率与[S]无关,并且达到最大值rmax,代入(5)可得

   (6)

  则当 r=(1/2)rmax 时,kM=[S],即米氏常数等于最大反应速率一半时的底物浓度。若对(5)式积分并除以时间t,可得

   (7)

  式(7)中,[S]0为底物初始浓度,若以作图,可得一斜率为kM,截距为k2[E]0的直线。

  本实验用的蔗糖酶是一种水解酶,它能使蔗糖水解成葡萄糖和果糖,反应式如下:

  由于反应时水是大量的,在整个反应过程中浓度保持恒定,所以该反应动力学公式符合米哈利—门顿方程。可以用式(7)求出其kM值。便在反应进程中,快速分析反应物本身的浓度是困难的,必须将其转化为其他可测量参量。由于蔗糖及其转化产物均具有旋光性,而且它们的旋光能力各不相同,帮可以利用反应过程中旋光度的改变来度量反应进程。

  若以0表示实验开始时蔗糖溶液的旋光度,t表示在任意时刻t时的旋光度,表示反应完成后的旋光度,则蔗糖的原始浓度[S]0与(0-)成正比(见《蔗糖水解反应速度常数的测定》),t时刻溶液中剩余蔗糖的浓度[S]与(t-)成正比,则式(7)可变为

    (8)

  若将 对 作图,应得一直线,其斜率为米氏常数kM,截距为k2[E]0 。

  另外,酶反应速度除与底物浓度、酶浓度有关外,还与温度、离子强度、pH值和其他干扰物质(如微生物、抑制剂)等因素有关,因此在实验室中必须严格控制这些条件。

【仪器和试剂】

  1.仪器 : 旋光仪  1台   旋光管 1套  记时器(秒表) 1块     

       超级恒温槽  1个  锥形瓶(100ml) 2个  托盘天平  1台

       烧杯(500ml,1000ml) 各1个  移液管(25ml)2支   移液管(ml)2支

2.药品 : 0.10mol/L/乙酸-乙酸钠缓冲溶液

    蔗糖贮备液:将200g蔗糖溶于500ml二次蒸馏水中,若溶液浑浊则需要过滤,然后移入1000ml容量瓶中,备用。

    蔗糖酶贮备液:在100ml锥形瓶中,加入50ml二次蒸馏水,10g新鲜酵母0.8g乙酸钠,搅拌至全部溶解,加入1.5ml甲苯,封口,摇动10min后,于37℃保温60h。取出后用1.6ml 4.0mol/L乙酸调pH至4.5左右,用转速为3000r/min的离心机离心0.5h。该混合物被分为三层,中层即为粗制酶液。取出后将其稀释至蔗糖水解反应起始5min内,须给出旋光度的变化值为0.5~2度,方可备用。


【实验步骤】   

   (1)、0的测定 

  在清洁干燥的100ml烧杯中,依次加入25ml蔗糖贮备液、1ml二次蒸馏水、25ml0.10mol/L乙酸-乙酸钠缓冲溶液,在电磁搅拌器上充分混合,并恒温至测量温度,用少量上述混合液清洗旋光管二次,然后装满放入已怛温的旋光仪中,读取四次旋光度。取其平均值。记为0。

  (2)、t的测定

  在另一清洁干燥的100ml烧杯中,依次加入25ml蔗糖贮备液,25ml0.10mol/L乙酸-乙酸钠缓冲溶液,在电磁搅拌器上混合均匀后,恒温至实验温度。在快速搅拌下,加入1ml蔗糖酶贮备液,并开始计时。充分混合后,用少量溶液很快地清洗旋光管两次,然后装满放入已恒温的旋光仪中,并尽快地读取第一个数据(距加入酶的时间尽量不超过去时1~2min),在反应开始后的起始10min内,1min测量一次,此后,3min测量一次,直到旋光度变为负值。

  (3)、的测定

  测定完后,将旋光管从旋光仪中取出,放入40℃的恒温水浴中,每20min从水浴中取出,擦干后测量旋光度,然后再放入水浴中,重复这一过程,直到连续两次读数的差值在仪器测量误差范围内为止。取平均值作为


  

【数据记录与处理】

实验数据记录  

室温:      大气压力:      pa 

乙酸-乙酸钠缓冲溶液       

(1)、实验数据记录入计算处理

0        ;        ;[S]0           

序号
反应时间/min
t
1
0
0
0
0
2
0
0
0
0
3
0
0
0
0
4
0
0
0
0
5
0
0
0
0
6
0
0
0
0
7
0
0
0
0
8
0
0
0
0
9
0
0
0
0

(2)、以 对 作图,由该直线斜率求米氏常数kM。

(3)、由该直线截距,计算最大反应速率rmaxk2[E]0


【思考与讨论】

  (1)、为什么本实验中,没有对旋光仪进行零点校正?这样会引入实验误差吗?

  (2)、为什么在实验前必须对所使用的玻璃仪器进行高温消毒?

【注意事项】

  实验所用酶要求比较严格,制备贮备酶要求使用新鲜蔗糖酶。且应该在低温下保存备用。

 

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